ROUGE PHÉNOL BOUILLON

Fiche technique # 2030 / 2010.09.01

Le bouillon Rouge Phénol est utilisé avec des hydrates de carbone pour la différenciation des micro-organismes sur la base des réactions de fermentation des hydrates de carbone.

 

FORMULE

en grammes par litre d'eau purifiée filtrée

Enzyme de Caséine.......................10 g

Chlorure de Sodium........................5 g

Rouge de Phénol......................0.018 g

Supplément

Hydrates de Carbone désirés....5 – 10 g

pH 7.4 ±0.2 à 25 ̊ C

Cette formule approximative peut être ajustée et/ou enrichie pour des résultats optimaux.                  

PRÉCAUTIONS

Ce milieu est pour usage exclusif en laboratoire. Irritant pour les yeux, les voies respiratoires et la peau.

CONSERVATION

Entreposer le milieu déshydraté dans un contenant hermétiquement fermé, dans un endroit sec entre 2-25o C. Garder le milieu préparé à l'abri de la lumière.

DÉTÉRIORATION

Ne pas utiliser un milieu déshydraté pris en masse ou croûté. Rejeter un milieu préparé présentant des signes de contamination ou de déshydratation. Ne pas utiliser un milieu, dont la date de péremption est dépassée.

PRÉPARATIONS

Verser 15 g de milieu dans 1000 ml d'eau purifiée filtrée. Chauffer en agitant fréquemment et laisser bouillir  une minute. Ajouter 5-10 g d’hydrates de carbone au choix. Stériliser à 121º C pendant 15 minutes. Alternativement les solutions d’hydrates de carbone filtrées et stérilisées peuvent être ajoutées au bouillon stérilisé et refroidi.

TECHNIQUE

1. Inoculer les tubes avec des colonies isolées.

2. Un tube Durham inversé, ajouté au bouillon préalablement stérilisé, est utilisé pour détecter la production de gaz.

3. Incuber à 35 ± 2 ̊ C pendant 18 – 48 heures avec les bouchons devisés..

4. Examiner les tubes pour la croissance, la production d’acides et la production de gaz (si les tubes Durham ont été utilisés).

CONTRÔLE DE QUALITÉ

Résultats à 35 ± 2̊ C et examiner la croissance après  18 - 48 heures d’incubation. 

Microorganismes            ATCC

Approx. Inoculum (CFU)

Résultats attendus avec Dextrose

Croissance

Acide

Gaz

Escherichiacoli                25922

10 - 300

Good

+

+

Proteusvulgaris               13315

10 - 300

Good

-

-

Salmonellatyphimurium    14028

10 - 300

Good

+

+

LIMITES DE LA MÉTHODE

Ce milieu permet une identification partielle. D'autres tests peuvent être requis.

RÉFÉRENCES

1.       Isenberg, H. D. (ed.). 1992. Clinical microbiology procedures handbook. American Society for Microbiology, Washington, D.C.

2.       Murray, P. R., E. J. Baron, M. A. Pfaller, F. C. Tenover, and R. H. Yolken (eds.). Manual of clinical microbiology, 6th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C.

3.       Vera, H. D. 1950. Relation of peptones and other culture media ingredients to accuracy of fermentation tests. Am. J. Public Health. 40:1267.

4.       Bacteriological Analytical Manual. 1995. 8th ed. AOAC International, Gaithersburg, MD.

5.       Vanderzant, C., and D. F. Splittstoesser. 1992. Compendium of methods for the microbiological  examination of food. American Public Health Association, Washington, D.C.

6.       Association  of  Official  Analytical  Chemists.  1995.  Official  methods  of  analysis  of  AOAC  International.  AOAC  International, Arlington, VA.

7.       MacFaddin, J. F. 1985. Media for isolation-cultivation-identification-maintenance of medical bacteria. Williams & Wilkins, Baltimore, MD.

NUMÉRO DU CATALOGUE

Tube                            10/pqt                2030